■ ง่ายและรวดเร็ว: การขยาย PCR สามารถทำได้โดยตรงโดยใช้เลือดเป็นแม่แบบ โดยไม่ต้องใช้ขั้นตอนที่ยุ่งยากในการเตรียมตัวอย่างและการสกัดดีเอ็นเอ
■ ความบริสุทธิ์สูง: การข้ามขั้นตอนการเตรียมตัวอย่างก่อนการบำบัดและการสกัดดีเอ็นเอสามารถช่วยหลีกเลี่ยงการปนเปื้อนข้ามตัวอย่างได้
■ ปริมาณงานสูง: การระบุ PCR สำหรับตัวอย่างขนาดใหญ่สามารถทำได้โดยการรวมชุดอุปกรณ์เข้ากับเพลต PCR 96/384 หลุม
■ ความเป็นสากลที่แข็งแกร่ง: ชุดอุปกรณ์นี้สามารถขยายชิ้นส่วน GC หรือชิ้นส่วนที่มีโครงสร้างทุติยภูมิที่ซับซ้อนได้อย่างมีประสิทธิภาพ และความยาวของการขยายสามารถสูงถึง 5 kb
■ ทนทานต่อความเครียดสูง: ชุดอุปกรณ์นี้ใช้ได้กับสายพันธุ์ต่างๆ และตัวอย่างเลือดที่เก็บรักษาไว้ในรูปแบบต่างๆ
ผลิตภัณฑ์ PCR ของชุดอุปกรณ์นี้มี “A” ที่ส่วนปลาย 3′ ซึ่งสามารถนำไปใช้โดยตรงสำหรับการโคลนเวกเตอร์ TA ชุดอุปกรณ์นี้สามารถใช้สำหรับการขยายชิ้นส่วนดีเอ็นเอของจีโนม การวิเคราะห์ทางพันธุกรรมปริมาณมาก และการวิเคราะห์จีโนไทป์ (เช่น การตรวจหายีน)
ผลิตภัณฑ์ทั้งหมดสามารถปรับแต่งสำหรับ ODM/OEM สำหรับรายละเอียดกรุณาคลิกบริการที่กำหนดเอง (ODM/OEM)
การใช้สารต้านการแข็งตัวของเลือด EDTA ของมนุษย์เป็นเทมเพลต ยีน 4 ตัวที่มีเนื้อหา GC ต่างกันได้รับการขยายโดย Blood Direct PCR Kit ระบบปฏิกิริยา PCR คือ 20 ไมโครลิตร และเลือด 1 ไมโครลิตรถูกใช้เป็นแม่แบบ M: TIANGEN Marker II; 1: ขนาดชิ้นส่วน 1090 bp เนื้อหา GC 68.1%; 2: ขนาดชิ้นส่วน 1915 bp, GC เนื้อหา 70.4%; 3: ขนาดชิ้นส่วน 448 bp, GC 74.8%; 4: ขนาดชิ้นส่วน 1527 bp เนื้อหา GC 61.5% ผลการทดลอง: Blood Direct PCR Kit สามารถขยายชิ้นส่วน DNA ได้อย่างมีประสิทธิภาพด้วยเนื้อหา GC ที่ช่วง 61.5%-74.8% ซึ่งบ่งชี้ว่าสามารถขยายชิ้นส่วน GC สูงได้ |
|
การใช้สารต้านการแข็งตัวของเลือด EDTA ของมนุษย์เป็นเทมเพลต ยีน 5 ตัวที่มีความยาวต่างกัน (ActB, Prp, DN1.0, Hn2.0 และ Hn4.0) ได้รับการขยายโดย Blood Direct PCR Kit ระบบปฏิกิริยา PCR คือ 20 ไมโครลิตร และเลือด 1 ไมโครลิตรถูกใช้เป็นแม่แบบ M: TIANGEN Marker II; 1-3: 3 ตัวอย่างเลือดที่แตกต่างกัน; กทช: ควบคุมโดยไม่ใช้ไพรเมอร์ ผลการทดลอง: Blood Direct PCR Kit สามารถขยายชิ้นส่วนที่มีความยาวได้ถึง 4 kb ซึ่งบ่งชี้ว่าสามารถขยายชิ้นส่วนที่มีความยาวได้ |
|
การใช้สารต้านการแข็งตัวของเลือด EDTA ของมนุษย์เป็นเทมเพลต ชุด Blood Direct PCR ใช้สำหรับตรวจหา PCR ของตัวอย่างเลือดต่างๆ ระบบปฏิกิริยา PCR คือ 20 ไมโครลิตร และเลือด 1 ไมโครลิตรถูกใช้เป็นแม่แบบ M: TIANGEN Marker II; 1-9: ปริมาณเลือดบรรจุ 0.1 ไมโครลิตร 0.2 ไมโครลิตร 0.3 ไมโครลิตร 0.4 ไมโครลิตร 1 ไมโครลิตร 2 ไมโครลิตร 3 ไมโครลิตร 4 ไมโครลิตร และ 5 ไมโครลิตร ตามลำดับ กทช: ควบคุมโดยไม่มีเทมเพลต ผลการทดลอง: Blood Direct PCR Kit มีความทนทานต่อเลือดและสามารถขยายตัวอย่างเลือดด้วยช่วงการบรรจุ 0.1-5 ไมโครลิตร |
|
ตัวอย่างเลือดจากคน หนู ไก่ และสายพันธุ์อื่นๆ ที่มีการบำบัดต่างกันถูกนำมาใช้เป็นแม่แบบ Blood Direct PCR Kit ใช้เพื่อขยาย PRNP (มนุษย์ 750 bp), Actin (หนู 200 bp) และ β-Actin (ไก่ 1.0 kb) ระบบปฏิกิริยา PCR คือ 20 ไมโครลิตร และเลือด 1 ไมโครลิตรถูกใช้เป็นแม่แบบ M: TIANGEN มาร์กเกอร์ II ผลการทดลอง: สามารถใช้ Blood Direct PCR Kit กับตัวอย่างได้หลากหลาย และการตรวจจับ PCR โดยตรงสามารถทำได้กับตัวอย่างเลือดจากสายพันธุ์ต่างๆ ด้วยการรักษาที่แตกต่างกัน |
เทมเพลต A-1
■ แม่แบบประกอบด้วยสิ่งเจือปนโปรตีนหรือสารยับยั้ง Taq เป็นต้น —— ทำให้แม่แบบ DNA บริสุทธิ์ ขจัดสิ่งเจือปนของโปรตีน หรือแยก DNA แม่แบบด้วยชุดการทำให้บริสุทธิ์
■ การเปลี่ยนสภาพของแม่แบบไม่สมบูรณ์ —— เพิ่มอุณหภูมิการเสื่อมสภาพอย่างเหมาะสมและยืดเวลาการเสื่อมสภาพให้นานขึ้น
■ การลดขนาดเทมเพลต —— เตรียมเทมเพลตอีกครั้ง
A-2 ไพรเมอร์
■ ไพรเมอร์คุณภาพต่ำ —— สังเคราะห์ไพรเมอร์อีกครั้ง
■ การเสื่อมสภาพของไพรเมอร์ —— แบ่งไพรเมอร์ที่มีความเข้มข้นสูงเป็นปริมาตรเล็กๆ เพื่อถนอมอาหาร หลีกเลี่ยงการแช่แข็งและละลายหลายครั้งหรือแช่เย็นที่อุณหภูมิ 4°C ในระยะยาว
■ การออกแบบไพรเมอร์ที่ไม่เหมาะสม (เช่น ความยาวไพรเมอร์ไม่เพียงพอ มีไดเมอร์เกิดขึ้นระหว่างไพรเมอร์ เป็นต้น) -ออกแบบไพรเมอร์ใหม่ (หลีกเลี่ยงการก่อตัวของไพรเมอร์ไดเมอร์และโครงสร้างรอง)
A-3 มก.2+ความเข้มข้น
■ มก2+ ความเข้มข้นต่ำเกินไป —— เพิ่ม Mg . อย่างเหมาะสม2+ ความเข้มข้น: ปรับ Mg . ให้เหมาะสม2+ ความเข้มข้นโดยชุดของปฏิกิริยาตั้งแต่ 1 mM ถึง 3 mM โดยมีช่วงเวลา 0.5 mM เพื่อกำหนด Mg ที่เหมาะสมที่สุด2+ ความเข้มข้นสำหรับแต่ละแม่แบบและไพรเมอร์
A-4 อุณหภูมิการหลอม
■ อุณหภูมิการหลอมที่สูงส่งผลต่อการยึดเกาะของสีรองพื้นและแม่แบบ —— ลดอุณหภูมิการหลอมและปรับสภาพให้เหมาะสมด้วยการไล่ระดับ 2°C
A-5 ขยายเวลา
■ ขยายเวลาสั้น——เพิ่มเวลาขยาย.
ปรากฏการณ์: ตัวอย่างเชิงลบยังแสดงแถบลำดับเป้าหมายด้วย
A-1 การปนเปื้อนของ PCR
■ การปนเปื้อนข้ามของลำดับเป้าหมายหรือผลิตภัณฑ์ที่มีการขยายเสียง —— ระวังอย่าปิเปตตัวอย่างที่มีลำดับเป้าหมายในตัวอย่างเชิงลบหรือหกออกจากหลอดสำหรับการหมุนเหวี่ยง น้ำยาหรืออุปกรณ์ควรผ่านการฆ่าเชื้อด้วยไอน้ำเพื่อกำจัดกรดนิวคลีอิกที่มีอยู่ และควรพิจารณาการมีอยู่ของการปนเปื้อนผ่านการทดลองควบคุมเชิงลบ
■ การปนเปื้อนรีเอเจนต์ —— แบ่งรีเอเจนต์และเก็บที่อุณหภูมิต่ำ
A-2 ไพรม์r
■ มก2+ ความเข้มข้นต่ำเกินไป —— เพิ่ม Mg . อย่างเหมาะสม2+ ความเข้มข้น: ปรับ Mg . ให้เหมาะสม2+ ความเข้มข้นโดยชุดของปฏิกิริยาตั้งแต่ 1 mM ถึง 3 mM โดยมีช่วงเวลา 0.5 mM เพื่อกำหนด Mg ที่เหมาะสมที่สุด2+ ความเข้มข้นสำหรับแต่ละแม่แบบและไพรเมอร์
■ การออกแบบไพรเมอร์ที่ไม่เหมาะสม และลำดับเป้าหมายมีความคล้ายคลึงกันกับลำดับที่ไม่ใช่เป้าหมาย ——ออกแบบไพรเมอร์ใหม่
ปรากฏการณ์: แถบขยายสัญญาณ PCR ไม่สอดคล้องกับขนาดที่คาดไว้ ไม่ว่าจะใหญ่หรือเล็ก หรือบางครั้งมีทั้งแถบขยายสัญญาณเฉพาะและแถบขยายสัญญาณที่ไม่เฉพาะเจาะจงเกิดขึ้น
เอ-1 ไพรเมอร์
■ความจำเพาะของไพรเมอร์แย่
——ออกแบบไพรเมอร์ใหม่
■ ความเข้มข้นของไพรเมอร์สูงเกินไป —— เพิ่มอุณหภูมิการทำให้เสียสภาพอย่างเหมาะสมและยืดเวลาการเสื่อมสภาพให้นานขึ้น
A-2 มก.2+ ความเข้มข้น
■ Mg2+ ความเข้มข้นสูงเกินไป —— ลดความเข้มข้นของ Mg2+ อย่างเหมาะสม: ปรับ Mg . ให้เหมาะสม2+ ความเข้มข้นโดยชุดของปฏิกิริยาตั้งแต่ 1 mM ถึง 3 mM โดยมีช่วงเวลา 0.5 mM เพื่อกำหนด Mg ที่เหมาะสมที่สุด2+ ความเข้มข้นสำหรับแต่ละแม่แบบและไพรเมอร์
A-3 พอลิเมอเรสที่ทนความร้อนได้
■ ปริมาณเอนไซม์ที่มากเกินไป —— ลดปริมาณเอนไซม์อย่างเหมาะสมในช่วงเวลา 0.5 U
A-4 อุณหภูมิการหลอม
■ อุณหภูมิการหลอมต่ำเกินไป —— เพิ่มอุณหภูมิการหลอมอย่างเหมาะสมหรือใช้วิธีการหลอมแบบสองขั้นตอน
A-5 PCR รอบ
■ รอบ PCR มากเกินไป —— ลดจำนวนรอบ PCR
เอ-1 ไพรเมอร์——ความจำเพาะไม่ดี —— ออกแบบไพรเมอร์ใหม่ เปลี่ยนตำแหน่งและความยาวของไพรเมอร์เพื่อเพิ่มความจำเพาะ หรือดำเนินการ PCR ที่ซ้อนกัน
A-2 แม่แบบ DNA
—— แม่แบบไม่บริสุทธิ์ —— ทำให้แม่แบบบริสุทธิ์หรือแยก DNA ด้วยชุดการทำให้บริสุทธิ์
A-3 มก.2+ ความเข้มข้น
——Mg2+ ความเข้มข้นสูงเกินไป —— ลด Mg . อย่างเหมาะสม2+ ความเข้มข้น: ปรับ Mg . ให้เหมาะสม2+ ความเข้มข้นโดยชุดของปฏิกิริยาตั้งแต่ 1 mM ถึง 3 mM โดยมีช่วงเวลา 0.5 mM เพื่อกำหนด Mg ที่เหมาะสมที่สุด2+ ความเข้มข้นสำหรับแต่ละแม่แบบและไพรเมอร์
A-4 dNTP
——ความเข้มข้นของ dNTP สูงเกินไป —— ลดความเข้มข้นของ dNTP อย่างเหมาะสม
A-5 อุณหภูมิการหลอม
—— อุณหภูมิการหลอมต่ำเกินไป —— เพิ่มอุณหภูมิการหลอมอย่างเหมาะสม
A-6 รอบ
—— รอบมากเกินไป —— ปรับหมายเลขรอบให้เหมาะสม
ขั้นตอนแรกคือการเลือกพอลิเมอเรสที่เหมาะสม Taq polymerase ปกติไม่สามารถพิสูจน์อักษรได้เนื่องจากขาดกิจกรรม exonuclease 3'-5' และไม่ตรงกันจะลดประสิทธิภาพการขยายของแฟรกเมนต์ลงอย่างมาก ดังนั้น Taq polymerase ปกติจึงไม่สามารถขยายชิ้นส่วนเป้าหมายที่มีขนาดใหญ่กว่า 5 kb ได้อย่างมีประสิทธิภาพ ควรเลือก Taq polymerase ที่มีการดัดแปลงพิเศษหรือโพลิเมอร์ที่มีความเที่ยงตรงสูงอื่นๆ เพื่อปรับปรุงประสิทธิภาพการขยายและตอบสนองความต้องการของการขยายชิ้นส่วนแบบยาว นอกจากนี้ การขยายชิ้นส่วนที่มีความยาวยังต้องการการปรับการออกแบบไพรเมอร์ เวลาการเปลี่ยนสภาพ เวลาในการขยาย ค่า pH ของบัฟเฟอร์ ฯลฯ โดยปกติแล้ว ไพรเมอร์ที่มี 18-24 bp จะทำให้ได้ผลผลิตดีขึ้น เพื่อป้องกันความเสียหายของแม่แบบ ควรลดเวลาในการเปลี่ยนสภาพที่ 94°C เป็น 30 วินาทีหรือน้อยกว่าต่อรอบ และเวลาในการเพิ่มอุณหภูมิเป็น 94°C ก่อนการขยายเสียงควรน้อยกว่า 1 นาที นอกจากนี้ การตั้งอุณหภูมิการขยายที่ประมาณ 68°C และการออกแบบเวลาการขยายตามอัตรา 1 kb/นาที สามารถรับประกันการขยายชิ้นส่วนที่ยาวได้อย่างมีประสิทธิภาพ
อัตราความผิดพลาดของการขยาย PCR สามารถลดลงได้โดยใช้ DNA polymerase ต่างๆ ที่มีความเที่ยงตรงสูง ในบรรดา Taq DNA polymerase ทั้งหมดที่พบจนถึงตอนนี้ เอนไซม์ Pfu มีอัตราความผิดพลาดต่ำสุดและความเที่ยงตรงสูงสุด (ดูตารางแนบ) นอกจากการเลือกเอนไซม์แล้ว นักวิจัยสามารถลดอัตราการกลายพันธุ์ของ PCR ได้อีกโดยการปรับสภาวะของปฏิกิริยาให้เหมาะสม รวมถึงการเพิ่มประสิทธิภาพองค์ประกอบบัฟเฟอร์ ความเข้มข้นของพอลิเมอเรสที่ทนความร้อนได้ และการปรับหมายเลขรอบ PCR ให้เหมาะสม
นับตั้งแต่ก่อตั้ง โรงงานของเราได้พัฒนาผลิตภัณฑ์ระดับโลกเป็นครั้งแรกโดยยึดมั่นในหลักการ
ที่มีคุณภาพก่อน ผลิตภัณฑ์ของเราได้รับชื่อเสียงที่ดีเยี่ยมในอุตสาหกรรมและมีคุณค่าความไว้วางใจจากลูกค้าทั้งเก่าและใหม่..