ชุด PCR เลือดโดยตรง

การขยายอย่างรวดเร็วของยีนเป้าหมายโดยตรงโดยใช้เลือดเป็นแม่แบบโดยไม่ต้องสกัด

ชุดนี้ใช้ DNA polymerase ที่ต่อต้านการยับยั้งที่ดัดแปลงพันธุกรรมเพื่อขยายยีนสำเนาเดียวในจีโนมมนุษย์อย่างมีประสิทธิภาพ ระบบบัฟเฟอร์ที่ปรับให้เหมาะสมที่สุดในชุดนี้ช่วยให้โพลีเมอเรสต้านทานการยับยั้งสารยับยั้ง PCR ได้อย่างมาก จึงสามารถขยาย DNA ได้โดยตรงโดยใช้เลือดและเซลล์ที่เพาะเลี้ยงเป็นแม่แบบ ผลิตภัณฑ์นี้ใช้งานง่ายและไม่ต้องการขั้นตอนที่ซับซ้อน เช่น การทำให้ DNA บริสุทธิ์หรือการปรับสภาพตัวอย่าง
ชุดนี้จัดทำเป็น 2×MasterMix และปฏิกิริยาสามารถทำได้โดยเพียงแค่เพิ่มเทมเพลตเลือดและไพรเมอร์การตรวจจับที่เกี่ยวข้อง สามารถใช้กับเซลล์เพาะเลี้ยงของสัตว์เลี้ยงลูกด้วยนม เช่น มนุษย์ หนู สุกร วัวควาย และสายพันธุ์อื่นๆ รวมทั้งเลือดครบส่วนสดหรือแช่เยือกแข็ง 4 องศาเซลเซียส สารกันเลือดแข็ง (EDTA ซิเตรต เฮปาริน) ลิ่มเลือดเหลว และจุดเลือดแห้ง เก็บไว้ในการ์ดเชิงพาณิชย์ Whatman 903 และ FTA Elute

แมว. เลขที่ ขนาดบรรจุ
4992529 20 µl×100 rxn
4992530 20 ไมโครลิตร×500 rxn

รายละเอียดผลิตภัณฑ์

ตัวอย่างการทดลอง

คำถามที่พบบ่อย

แท็กสินค้า

คุณสมบัติ

■ ง่ายและรวดเร็ว: การขยาย PCR สามารถทำได้โดยตรงโดยใช้เลือดเป็นแม่แบบ โดยไม่ต้องใช้ขั้นตอนที่ยุ่งยากในการเตรียมตัวอย่างและการสกัดดีเอ็นเอ
■ ความบริสุทธิ์สูง: การข้ามขั้นตอนการเตรียมตัวอย่างก่อนการบำบัดและการสกัดดีเอ็นเอสามารถช่วยหลีกเลี่ยงการปนเปื้อนข้ามตัวอย่างได้
■ ปริมาณงานสูง: การระบุ PCR สำหรับตัวอย่างขนาดใหญ่สามารถทำได้โดยการรวมชุดอุปกรณ์เข้ากับเพลต PCR 96/384 หลุม
■ ความเป็นสากลที่แข็งแกร่ง: ชุดอุปกรณ์นี้สามารถขยายชิ้นส่วน GC หรือชิ้นส่วนที่มีโครงสร้างทุติยภูมิที่ซับซ้อนได้อย่างมีประสิทธิภาพ และความยาวของการขยายสามารถสูงถึง 5 kb
■ ทนทานต่อความเครียดสูง: ชุดอุปกรณ์นี้ใช้ได้กับสายพันธุ์ต่างๆ และตัวอย่างเลือดที่เก็บรักษาไว้ในรูปแบบต่างๆ

แอปพลิเคชั่น

ผลิตภัณฑ์ PCR ของชุดอุปกรณ์นี้มี “A” ที่ส่วนปลาย 3′ ซึ่งสามารถนำไปใช้โดยตรงสำหรับการโคลนเวกเตอร์ TA ชุดอุปกรณ์นี้สามารถใช้สำหรับการขยายชิ้นส่วนดีเอ็นเอของจีโนม การวิเคราะห์ทางพันธุกรรมปริมาณมาก และการวิเคราะห์จีโนไทป์ (เช่น การตรวจหายีน)

ผลิตภัณฑ์ทั้งหมดสามารถปรับแต่งสำหรับ ODM/OEM สำหรับรายละเอียดกรุณาคลิกบริการที่กำหนดเอง (ODM/OEM)


  • ก่อนหน้า:
  • ต่อไป:

  • product_certificate04 product_certificate01 product_certificate03 product_certificate02
    ×
    Experimental Example การใช้สารต้านการแข็งตัวของเลือด EDTA ของมนุษย์เป็นเทมเพลต ยีน 4 ตัวที่มีเนื้อหา GC ต่างกันได้รับการขยายโดย Blood Direct PCR Kit ระบบปฏิกิริยา PCR คือ 20 ไมโครลิตร และเลือด 1 ไมโครลิตรถูกใช้เป็นแม่แบบ
    M: TIANGEN Marker II; 1: ขนาดชิ้นส่วน 1090 bp เนื้อหา GC 68.1%; 2: ขนาดชิ้นส่วน 1915 bp, GC เนื้อหา 70.4%; 3: ขนาดชิ้นส่วน 448 bp, GC 74.8%; 4: ขนาดชิ้นส่วน 1527 bp เนื้อหา GC 61.5%
    ผลการทดลอง: Blood Direct PCR Kit สามารถขยายชิ้นส่วน DNA ได้อย่างมีประสิทธิภาพด้วยเนื้อหา GC ที่ช่วง 61.5%-74.8% ซึ่งบ่งชี้ว่าสามารถขยายชิ้นส่วน GC สูงได้
    Experimental Example การใช้สารต้านการแข็งตัวของเลือด EDTA ของมนุษย์เป็นเทมเพลต ยีน 5 ตัวที่มีความยาวต่างกัน (ActB, Prp, DN1.0, Hn2.0 และ Hn4.0) ได้รับการขยายโดย Blood Direct PCR Kit ระบบปฏิกิริยา PCR คือ 20 ไมโครลิตร และเลือด 1 ไมโครลิตรถูกใช้เป็นแม่แบบ
    M: TIANGEN Marker II; 1-3: 3 ตัวอย่างเลือดที่แตกต่างกัน; กทช: ควบคุมโดยไม่ใช้ไพรเมอร์ ผลการทดลอง: Blood Direct PCR Kit สามารถขยายชิ้นส่วนที่มีความยาวได้ถึง 4 kb ซึ่งบ่งชี้ว่าสามารถขยายชิ้นส่วนที่มีความยาวได้
    Experimental Example การใช้สารต้านการแข็งตัวของเลือด EDTA ของมนุษย์เป็นเทมเพลต ชุด Blood Direct PCR ใช้สำหรับตรวจหา PCR ของตัวอย่างเลือดต่างๆ ระบบปฏิกิริยา PCR คือ 20 ไมโครลิตร และเลือด 1 ไมโครลิตรถูกใช้เป็นแม่แบบ
    M: TIANGEN Marker II; 1-9: ปริมาณเลือดบรรจุ 0.1 ไมโครลิตร 0.2 ไมโครลิตร 0.3 ไมโครลิตร 0.4 ไมโครลิตร 1 ไมโครลิตร 2 ไมโครลิตร 3 ไมโครลิตร 4 ไมโครลิตร และ 5 ไมโครลิตร ตามลำดับ กทช: ควบคุมโดยไม่มีเทมเพลต
    ผลการทดลอง: Blood Direct PCR Kit มีความทนทานต่อเลือดและสามารถขยายตัวอย่างเลือดด้วยช่วงการบรรจุ 0.1-5 ไมโครลิตร
    Experimental Example ตัวอย่างเลือดจากคน หนู ไก่ และสายพันธุ์อื่นๆ ที่มีการบำบัดต่างกันถูกนำมาใช้เป็นแม่แบบ Blood Direct PCR Kit ใช้เพื่อขยาย PRNP (มนุษย์ 750 bp), Actin (หนู 200 bp) และ β-Actin (ไก่ 1.0 kb) ระบบปฏิกิริยา PCR คือ 20 ไมโครลิตร และเลือด 1 ไมโครลิตรถูกใช้เป็นแม่แบบ M: TIANGEN มาร์กเกอร์ II
    ผลการทดลอง: สามารถใช้ Blood Direct PCR Kit กับตัวอย่างได้หลากหลาย และการตรวจจับ PCR โดยตรงสามารถทำได้กับตัวอย่างเลือดจากสายพันธุ์ต่างๆ ด้วยการรักษาที่แตกต่างกัน
    ถาม: ไม่มีแถบขยายเสียง

    เทมเพลต A-1

    ■ แม่แบบประกอบด้วยสิ่งเจือปนโปรตีนหรือสารยับยั้ง Taq เป็นต้น —— ทำให้แม่แบบ DNA บริสุทธิ์ ขจัดสิ่งเจือปนของโปรตีน หรือแยก DNA แม่แบบด้วยชุดการทำให้บริสุทธิ์

    ■ การเปลี่ยนสภาพของแม่แบบไม่สมบูรณ์ —— เพิ่มอุณหภูมิการเสื่อมสภาพอย่างเหมาะสมและยืดเวลาการเสื่อมสภาพให้นานขึ้น

    ■ การลดขนาดเทมเพลต —— เตรียมเทมเพลตอีกครั้ง

    A-2 ไพรเมอร์

    ■ ไพรเมอร์คุณภาพต่ำ —— สังเคราะห์ไพรเมอร์อีกครั้ง

    ■ การเสื่อมสภาพของไพรเมอร์ —— แบ่งไพรเมอร์ที่มีความเข้มข้นสูงเป็นปริมาตรเล็กๆ เพื่อถนอมอาหาร หลีกเลี่ยงการแช่แข็งและละลายหลายครั้งหรือแช่เย็นที่อุณหภูมิ 4°C ในระยะยาว

    ■ การออกแบบไพรเมอร์ที่ไม่เหมาะสม (เช่น ความยาวไพรเมอร์ไม่เพียงพอ มีไดเมอร์เกิดขึ้นระหว่างไพรเมอร์ เป็นต้น) -ออกแบบไพรเมอร์ใหม่ (หลีกเลี่ยงการก่อตัวของไพรเมอร์ไดเมอร์และโครงสร้างรอง)

    A-3 มก.2+ความเข้มข้น

    ■ มก2+ ความเข้มข้นต่ำเกินไป —— เพิ่ม Mg . อย่างเหมาะสม2+ ความเข้มข้น: ปรับ Mg . ให้เหมาะสม2+ ความเข้มข้นโดยชุดของปฏิกิริยาตั้งแต่ 1 mM ถึง 3 mM โดยมีช่วงเวลา 0.5 mM เพื่อกำหนด Mg ที่เหมาะสมที่สุด2+ ความเข้มข้นสำหรับแต่ละแม่แบบและไพรเมอร์

    A-4 อุณหภูมิการหลอม

    ■ อุณหภูมิการหลอมที่สูงส่งผลต่อการยึดเกาะของสีรองพื้นและแม่แบบ —— ลดอุณหภูมิการหลอมและปรับสภาพให้เหมาะสมด้วยการไล่ระดับ 2°C

    A-5 ขยายเวลา

    ■ ขยายเวลาสั้น——เพิ่มเวลาขยาย.

    ถาม: ผลบวกลวง

    ปรากฏการณ์: ตัวอย่างเชิงลบยังแสดงแถบลำดับเป้าหมายด้วย

    A-1 การปนเปื้อนของ PCR

    ■ การปนเปื้อนข้ามของลำดับเป้าหมายหรือผลิตภัณฑ์ที่มีการขยายเสียง —— ระวังอย่าปิเปตตัวอย่างที่มีลำดับเป้าหมายในตัวอย่างเชิงลบหรือหกออกจากหลอดสำหรับการหมุนเหวี่ยง น้ำยาหรืออุปกรณ์ควรผ่านการฆ่าเชื้อด้วยไอน้ำเพื่อกำจัดกรดนิวคลีอิกที่มีอยู่ และควรพิจารณาการมีอยู่ของการปนเปื้อนผ่านการทดลองควบคุมเชิงลบ

    ■ การปนเปื้อนรีเอเจนต์ —— แบ่งรีเอเจนต์และเก็บที่อุณหภูมิต่ำ

    A-2 ไพรม์r

    ■ มก2+ ความเข้มข้นต่ำเกินไป —— เพิ่ม Mg . อย่างเหมาะสม2+ ความเข้มข้น: ปรับ Mg . ให้เหมาะสม2+ ความเข้มข้นโดยชุดของปฏิกิริยาตั้งแต่ 1 mM ถึง 3 mM โดยมีช่วงเวลา 0.5 mM เพื่อกำหนด Mg ที่เหมาะสมที่สุด2+ ความเข้มข้นสำหรับแต่ละแม่แบบและไพรเมอร์

    ■ การออกแบบไพรเมอร์ที่ไม่เหมาะสม และลำดับเป้าหมายมีความคล้ายคลึงกันกับลำดับที่ไม่ใช่เป้าหมาย ——ออกแบบไพรเมอร์ใหม่

    ถาม: การขยายสัญญาณแบบไม่เฉพาะเจาะจง

    ปรากฏการณ์: แถบขยายสัญญาณ PCR ไม่สอดคล้องกับขนาดที่คาดไว้ ไม่ว่าจะใหญ่หรือเล็ก หรือบางครั้งมีทั้งแถบขยายสัญญาณเฉพาะและแถบขยายสัญญาณที่ไม่เฉพาะเจาะจงเกิดขึ้น

    เอ-1 ไพรเมอร์

    ■ความจำเพาะของไพรเมอร์แย่

    ——ออกแบบไพรเมอร์ใหม่

    ■ ความเข้มข้นของไพรเมอร์สูงเกินไป —— เพิ่มอุณหภูมิการทำให้เสียสภาพอย่างเหมาะสมและยืดเวลาการเสื่อมสภาพให้นานขึ้น

    A-2 มก.2+ ความเข้มข้น

    ■ Mg2+ ความเข้มข้นสูงเกินไป —— ลดความเข้มข้นของ Mg2+ อย่างเหมาะสม: ปรับ Mg . ให้เหมาะสม2+ ความเข้มข้นโดยชุดของปฏิกิริยาตั้งแต่ 1 mM ถึง 3 mM โดยมีช่วงเวลา 0.5 mM เพื่อกำหนด Mg ที่เหมาะสมที่สุด2+ ความเข้มข้นสำหรับแต่ละแม่แบบและไพรเมอร์

    A-3 พอลิเมอเรสที่ทนความร้อนได้

    ■ ปริมาณเอนไซม์ที่มากเกินไป —— ลดปริมาณเอนไซม์อย่างเหมาะสมในช่วงเวลา 0.5 U

    A-4 อุณหภูมิการหลอม

    ■ อุณหภูมิการหลอมต่ำเกินไป —— เพิ่มอุณหภูมิการหลอมอย่างเหมาะสมหรือใช้วิธีการหลอมแบบสองขั้นตอน

    A-5 PCR รอบ

    ■ รอบ PCR มากเกินไป —— ลดจำนวนรอบ PCR

    ถาม: แถบเป็นหย่อมหรือเปื้อน

    เอ-1 ไพรเมอร์——ความจำเพาะไม่ดี —— ออกแบบไพรเมอร์ใหม่ เปลี่ยนตำแหน่งและความยาวของไพรเมอร์เพื่อเพิ่มความจำเพาะ หรือดำเนินการ PCR ที่ซ้อนกัน

    A-2 แม่แบบ DNA

    —— แม่แบบไม่บริสุทธิ์ —— ทำให้แม่แบบบริสุทธิ์หรือแยก DNA ด้วยชุดการทำให้บริสุทธิ์

    A-3 มก.2+ ความเข้มข้น

    ——Mg2+ ความเข้มข้นสูงเกินไป —— ลด Mg . อย่างเหมาะสม2+ ความเข้มข้น: ปรับ Mg . ให้เหมาะสม2+ ความเข้มข้นโดยชุดของปฏิกิริยาตั้งแต่ 1 mM ถึง 3 mM โดยมีช่วงเวลา 0.5 mM เพื่อกำหนด Mg ที่เหมาะสมที่สุด2+ ความเข้มข้นสำหรับแต่ละแม่แบบและไพรเมอร์

    A-4 dNTP

    ——ความเข้มข้นของ dNTP สูงเกินไป —— ลดความเข้มข้นของ dNTP อย่างเหมาะสม

    A-5 อุณหภูมิการหลอม

    —— อุณหภูมิการหลอมต่ำเกินไป —— เพิ่มอุณหภูมิการหลอมอย่างเหมาะสม

    A-6 รอบ

    —— รอบมากเกินไป —— ปรับหมายเลขรอบให้เหมาะสม

    ถาม: ควรเพิ่มเทมเพลต DNA เท่าใดในระบบปฏิกิริยา PCR ขนาด 50 ไมโครลิตร
    ytry
    ถาม: จะขยายชิ้นส่วนที่ยาวได้อย่างไร

    ขั้นตอนแรกคือการเลือกพอลิเมอเรสที่เหมาะสม Taq polymerase ปกติไม่สามารถพิสูจน์อักษรได้เนื่องจากขาดกิจกรรม exonuclease 3'-5' และไม่ตรงกันจะลดประสิทธิภาพการขยายของแฟรกเมนต์ลงอย่างมาก ดังนั้น Taq polymerase ปกติจึงไม่สามารถขยายชิ้นส่วนเป้าหมายที่มีขนาดใหญ่กว่า 5 kb ได้อย่างมีประสิทธิภาพ ควรเลือก Taq polymerase ที่มีการดัดแปลงพิเศษหรือโพลิเมอร์ที่มีความเที่ยงตรงสูงอื่นๆ เพื่อปรับปรุงประสิทธิภาพการขยายและตอบสนองความต้องการของการขยายชิ้นส่วนแบบยาว นอกจากนี้ การขยายชิ้นส่วนที่มีความยาวยังต้องการการปรับการออกแบบไพรเมอร์ เวลาการเปลี่ยนสภาพ เวลาในการขยาย ค่า pH ของบัฟเฟอร์ ฯลฯ โดยปกติแล้ว ไพรเมอร์ที่มี 18-24 bp จะทำให้ได้ผลผลิตดีขึ้น เพื่อป้องกันความเสียหายของแม่แบบ ควรลดเวลาในการเปลี่ยนสภาพที่ 94°C เป็น 30 วินาทีหรือน้อยกว่าต่อรอบ และเวลาในการเพิ่มอุณหภูมิเป็น 94°C ก่อนการขยายเสียงควรน้อยกว่า 1 นาที นอกจากนี้ การตั้งอุณหภูมิการขยายที่ประมาณ 68°C และการออกแบบเวลาการขยายตามอัตรา 1 kb/นาที สามารถรับประกันการขยายชิ้นส่วนที่ยาวได้อย่างมีประสิทธิภาพ

    ถาม: จะปรับปรุงความเที่ยงตรงของการขยายสัญญาณของ PCR ได้อย่างไร

    อัตราความผิดพลาดของการขยาย PCR สามารถลดลงได้โดยใช้ DNA polymerase ต่างๆ ที่มีความเที่ยงตรงสูง ในบรรดา Taq DNA polymerase ทั้งหมดที่พบจนถึงตอนนี้ เอนไซม์ Pfu มีอัตราความผิดพลาดต่ำสุดและความเที่ยงตรงสูงสุด (ดูตารางแนบ) นอกจากการเลือกเอนไซม์แล้ว นักวิจัยสามารถลดอัตราการกลายพันธุ์ของ PCR ได้อีกโดยการปรับสภาวะของปฏิกิริยาให้เหมาะสม รวมถึงการเพิ่มประสิทธิภาพองค์ประกอบบัฟเฟอร์ ความเข้มข้นของพอลิเมอเรสที่ทนความร้อนได้ และการปรับหมายเลขรอบ PCR ให้เหมาะสม

    เขียนข้อความของคุณที่นี่และส่งถึงเรา